Выпуск 23-5, 2024
Обзорная статья
Остеопластические биоматериалы из органических и минеральных компонентов костного матрикса: обзор литературы
1Марков П.А., 1,*Ерёмин П.С., 1Берёзкина Е.С.,1Волкова М.В., 1Усова И.А.,1Гильмутдинова И.Р.
1ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр реабилитации и курортологии» Минздрава России, Москва, Россия
РЕЗЮМЕ
ВВЕДЕНИЕ. Кости человека и животных обладают уникальной способностью к ремоделированию. Способность к постоянному обновлению костной ткани обусловливает заживление переломов и адаптацию костей к механическим нагрузкам. Однако про цесс самовосстановления кости эффективен только при дефектах некритического размера. При сегментарных и критических дефектах требуется эндогенная стимуляция регенерации костной ткани. В связи с этим сохраняется потребность в конструи ровании остеопластических биоматериалов с улучшенным прорегенеративным действием. С каждым годом появляются все новые данные, расширяющие наши представления о способах и механизмах стимуляции восстановления костной ткани с ис пользованием искусственных остеопластических материалов.
ЦЕЛЬ. Характеристика современных методов конструирования биомиметических материалов из органических и минеральных компонентов костного матрикса.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ. Литературный обзор проводился по базам данных PubMed и ScienceDirect. Даты запросов — май июль 2024 г., глубина запроса — 1965–2024 гг.
ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ ОБЗОРА. Эффективное применение костных полимеров для создания биомиметических остеопла стических материалов возможно только при понимании принципов молекулярно-клеточного взаимодействия биополимеров с костными клетками и тканями. К настоящему времени установлено, что способность коллагена оказывать влияние на функци ональную активность клеток, участвующих в репаративной регенерации костной ткани, обусловлена наличием в его структуре особых паттернов — сайтов связывания с клеточными рецепторами, которые образованы определенной последовательно стью аминокислот в полипептидной цепи коллагена. В случае с неорганическим костным материалом функционально значи мыми элементами являются химический состав и кристаллическая структура солей ФК. Сравнительно новым и актуальным направлением в конструировании остеопластических материалов является придание им биомиметических свойств. На моле кулярном уровне этот подход реализуется с использованием биохимических методов, например, внутрифибриллярной и экс трафибриллярной минерализации фибрилл коллагена. На тканевом и органном уровне биомимикрия достигается благодаря применению технологий трехмерной биопечати.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Таким образом, благодаря достижениям в области биологии, физики, химии и технических наук удалось раз работать новые технологии конструирования остеопластических материалов, имитирующих структуру и функцию нативной костной ткани. Применение биоматериалов, созданных с использованием принципов биомиметики, повышает эффективность восстановления повреждений костной ткани.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: коллаген, гидроксиапатит, трикальцийфосфаты, биокомпозиты, биокерамика
ИСТОЧНИК ФИНАНСИРОВАНИЯ: Данное исследование не было поддержано никакими внешними источниками финансирования.
КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ: Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.
ДЛЯ ЦИТИРОВАНИЯ:
Марков П.А., Ерёмин П.С., Берёзкина Е.С., Волкова М.В., Усова. И.А., Гильмутдинова И.Р. Остеопластические биоматериалы из органических и минеральных компонентов костного матрикса: обзор литературы. Вестник восстановительной медицины. 2024; 23(5):97-107. https://doi.org/10.38025/2078-1962-2024-23-5-97-107 [Markov P.A., Eremin P.S., Berezkina E.S., Volkova M.V., Usova I.A., Gilmutdinova I.R. Osteoplastic Biomaterials from Organic and Mineral Components of the Bone Matrix: a Literature Review. Bulletin of Rehabilitation Medicine. 2024; 23(5):97-107. https://doi.org/10.38025/2078-1962-2024-23-5-97-107 (In Russ.).]
ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:
Ерёмин Пётр Серафимович, E-mail: ereminps@gmail.com, EreminPS@nmicrk.ru
Список литературы:
- Florencio-Silva R., Sasso G.R., Sasso-Cerri E., et al. Biology of Bone Tissue: Structure, Function, and Factors That Influence Bone Cells. Biomedical Research International. 2015; 2015: 421746. https://doi.org/10.1155/2015/421746
- Rossi N., Hadad H., Bejar-Chapa M., et al. Bone Marrow Stem Cells with Tissue-Engineered Scaffolds for Large Bone Segmental Defects: A Systematic Review. Tissue Engineering Part B Rev. 2023; 29(5): 457–472. https://doi.org/10.1089/ten.TEB.2022.0213
- Intravaia J.T., Graham T., Kim H.S., et al. Smart Orthopedic Biomaterials and Implants. Current opinion in biomedical engineering. 2023; 25: 100439. https://doi.org/10.1016/j.cobme.2022.100439
- Cárdenas-Aguazaco W., Lara-Bertrand A. L., Prieto-Abello L., et al. Exploring calcium-free alternatives in endochondral bone repair tested on In vivo trials - A review. Regenerative therapy. 2024; 26: 145–160. https://doi.org/10.1016/j.reth.2024.05.017
- Khan M.U.A., Aslam M.A., Bin Abdullah M.F., et al. Recent perspective of polymeric biomaterial in tissue engineering — a review. Materials Today Chemistry. 2023; 34: 101818. https://doi.org/10.1016/j.mtchem.2023.101818
- Al Mahmud M.Z., Mobarak M.H., Hossain N., et al. Emerging breakthroughs in biomaterials for orthopedic applications: A comprehensive review. Bioprinting. 2023; 36: e00323. https://doi.org/10.1016/j.bprint.2023.e00323
- Battafarano G., Rossi M., De Martino V., et al. Strategies for Bone Regeneration: From Graft to Tissue Engineering. International Journal of Molecular Sciences. 2021; 22(3): 1128. https://doi.org/10.3390/ijms2203112810.3390/ijms22031128
- Senn N. Senn on the Healing of Aseptic Bone Cavities by Implantation of Antiseptic Decalcified Bone. Annals Surgery. 1889; 10(5): 352–368. https://doi.org/10.1097/00000658-188907000-00043
- Urist M.R. Bone: formation by autoinduction. Science. 1965; 150(3698): 893–899. https://doi.org/10.1126/science.150.3698.893
- Katz M.S., Ooms M., Heitzer M., et al. Postoperative Morbidity and Complications in Elderly Patients after Harvesting of Iliac Crest Bone Grafts. Medicina (Kaunas). 2021; 57(8): 759. https://doi.org/10.3390/medicina57080759
- Zhang H., Yang L., Yang X.G., et al. Demineralized Bone Matrix Carriers and their Clinical Applications: An Overview. Orthopaedic Surgery. 2019; 11(5): 725–737. https://doi.org/10.1111/os.12509
- Sorushanova A., Delgado L.M., Wu Z., et al. The Collagen Suprafamily: From Biosynthesis to Advanced Biomaterial Development. Advanced Materials. 2019; 31(1): e1801651. https://doi.org/10.1002/adma.201801651
- Siadat S.M., Ruberti J.W. Mechanochemistry of collagen. Acta Biomaterials. 2023; 163: 50–62. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2023.01.025
- Salvatore L., Gallo N., Natali M.L., et al. Mimicking the Hierarchical Organization of Natural Collagen: Toward the Development of Ideal Scaffolding Material for Tissue Regeneration. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2021; 9: 644595. https://doi.org/10.3389/fbioe.2021.644595
- Mikhailov O.V. Gelatin as It Is: History and Modernity. International Journal of Molecular Sciences. 2023; 24(4): 3583. https://doi.org/10.3390/ijms24043583
- Lin K., Zhang D., Macedo M.H., et al. Advanced collagen-based biomaterials for regenerative biomedicine. Advanced Functional Materials. 2019; 29: 1804943. https://doi.org/10.1002/adfm.201804943
- Hoop C.L., Zhu J., Nunes A.M., et al. Revealing Accessibility of Cryptic Protein Binding Sites within the Functional Collagen Fibril. Biomolecules. 2017; 7(4): 76. https://doi.org/10.3390/biom7040076
- Ghatak S., Niland S., Schulz J.N., et al. Role of Integrins α1β1 and α2β1 in Wound and Tumor Angiogenesis in Mice. American Journal of Pathology. 2016; 86(11): 3011–3027. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2016.06.021
- Zhou L., Hinerman J.M., Blaszczyk M., et al. Structural basis for collagen recognition by the immune receptor OSCAR. Blood. 2016; 127(5): 529–537. https://doi.org/10.1182/blood-2015-08-667055
- Joyce K., Fabra G.T., Bozkurt Y., Pandit A. Bioactive potential of natural biomaterials: identification, retention and assessment of biological properties. Signal Transduction and Targeted Therapy. 2021; 6(1): 122. https://doi.org/10.1038/s41392-021-00512-8
- Kang J.I., Park K.M. Advances in gelatin-based hydrogels for wound management. Journal of Materials Chemistry B. 2021; 9(6): 1503–1520. https://doi.org/10.1039/D0TB02582H
- Feng Y., Qin S., Yang Y., et al. A functional hydrogel of dopamine-modified gelatin with photothermal properties for enhancing infected wound healing. Colloids and surfaces. B, Biointerfaces. 2024; 241: 114058. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2024.114058
- Cui B., Zhang C., Gan B., et al. Collagen-tussah silk fibroin hybrid scaffolds loaded with bone mesenchymal stem cells promote skin wound repair in rats. Materials science and engineering. C, Materials for biological applications. 2020; 109: 110611. https://doi.org/10.1016/j.msec.2019.110611
- Hong C., Chung H., Lee G., et al. Remendable Cross-Linked Alginate/Gelatin Hydrogels Incorporating Nanofibers for Wound Repair and Regeneration. Biomacromolecules. 2024; 25(7): 4344–4357. https://doi.org/10.1021/acs.biomac.4c00406
- Qin D., Wang N., You X.G., et al. Collagen-based biocomposites inspired by bone hierarchical structures for advanced bone regeneration: ongoing research and perspectives. Biomaterial Science. 2022; 10(2): 318–353. https://doi.org/10.1039/d1bm01294k
- Maternini M., Guttadauro A., Mascagni D., et al. Non cross-linked equine collagen (Salvecoll-E gel) for treatment of complex ano-rectal fistula. Asian Journal of Surgery. 2019; 43: 401–404. https://doi.org/10.1016/j.asjsur.2019.06.009
- Rezvani Ghomi E., Nourbakhsh N., Akbari Kenari M., et al. Collagen-based biomaterials for biomedical applications. Journal of biomedical materials research. Part B, Applied biomaterials. 2021; 109(12): 1986–1999. https://doi.org/10.1002/jbm.b.34881
- Wang Y., Wang Z., Dong Y. Collagen-Based Biomaterials for Tissue Engineering. ACS biomaterials science & engineering. 2023; 9(3): 1132–1150. https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.2c00730
- Dawson E., Bae H.W., Burkus J.K., et al. Recombinant human bone morphogenetic protein-2 on an absorbable collagen sponge with an osteoconductive bulking agent in posterolateral arthrodesis with instrumentation. A prospective randomized trial. Journal of bone and joint surgery. 2009; 91(7): 1604–1613. https://doi.org/10.2106/JBJS.G.01157
- Lu H., Kawazoe N., Kitajima T., et al. Spatial immobilization of bone morphogenetic protein-4 in a collagen-PLGA hybrid scaffold for enhanced osteoinductivity. Biomaterials. 2012; 33(26): 6140–6146. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2012.05.038
- Oryan A., Alidadi S., Moshiri A., Bigham-Sadegh A. Bone morphogenetic proteins: a powerful osteoinductive compound with non-negligible side effects and limitations. Biofactors. 2014; 40(5): 459–481. https://doi.org/10.1002/biof.1177
- Salvatore L., Gallo N., Natali M.L. et al. Marine collagen and its derivatives: Versatile and sustainable bio-resources for healthcare. Materials Science & Engineering C-Materials for Biological Applications. 2020; 113: 110963. https://doi.org/10.1016/j.msec.2020.110963
- Song J.E., Thangavelu M., Choi J., et al. Bone Regeneration Using Duck’s Feet-Derived Collagen Scaffold as an Alternative Collagen Source. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2020; 1250: 3–13. https://doi.org/10.1007/978-981-15-3262-7_1
- Lim D.J. Bone Mineralization in Electrospun-Based Bone Tissue Engineering. Polymers (Basel). 2022; 14(10): 2123. https://doi.org/10.3390/polym14102123
- Takagi S., Chow L.C., Ishikawa K. Formation of hydroxyapatite in new calcium phosphate cements. Biomaterials. 1998; 19(17): 1593–1599. https://doi.org/10.1016/S0142-9612(97)00119-1
- Jeong J., Kim J.H., Shim J.H., et al. Bioactive calcium phosphate materials and applications in bone regeneration. Biomaterials research. 2019; 23: 4. https://doi.org/10.1186/s40824-018-0149-3
- Hou X., Zhang L., Zhou Z., et al. Calcium Phosphate-Based Biomaterials for Bone Repair. Journal of Functional Biomaterials. 2022; 13(4): 187. https://doi.org/10.3390/jfb13040187
- Ambard A.J., Mueninghoff, L. Calcium Phosphate Cement: Review of Mechanical and Biological Properties. Journal of Prosthodontics. 2006; 15: 321–328. https://doi.org/10.1111/j.1532-849X.2006.00129.x
- Ramesh N., Moratti S.C., Dias G.J. Hydroxyapatite-polymer biocomposites for bone regeneration: A review of current trends. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 2018; 106(5): 2046–2057. https://doi.org/10.1002/jbm.b.33950
- Samavedi S., Whittington A.R., Goldstein A.S. Calcium phosphate ceramics in bone tissue engineering: a review of properties and their influence on cell behavior. Acta Biomaterials. 2013; 9(9): 8037–8045. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2013.06.014
- Xiao D., Zhang J., Zhang C., et al. The role of calcium phosphate surface structure in osteogenesis and the mechanisms involved. Acta Biomaterialia. 2020; 106: 22–33. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2019.12.034
- Katebifar S., Arul M., Abdulmalik S., et al. Novel high-strength polyester composite scaffolds for bone regeneration. Polymers for advanced technologies. 2023; 34(12): 3770–3791. https://doi.org/10.1002/pat.6178
- Terkawi M.A., Matsumae G., Shimizu T., et al. Interplay between Inflammation and Pathological Bone Resorption: Insights into Recent Mechanisms and Pathways in Related Diseases for Future Perspectives. International Journal of Molecular Sciences. 2022; 23(3): 1786. https://doi.org/10.3390/ijms23031786
- Ponzetti M., Rucci N. Updates on Osteoimmunology: What’s New on the Cross-Talk Between Bone and Immune System. Frontiers in Endocrinology 2019; 10: 236. https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00236
- Mariani E., Lisignoli G., Borzì R.M., Pulsatelli L. Biomaterials: Foreign Bodies or Tuners for the Immune Response? International journal of molecular sciences. 2019; 20(3): 636. https://doi.org/10.3390/ijms20030636
- Gou M., Wang H., Xie H., Song, H. Macrophages in guided bone regeneration: potential roles and future directions. Frontiers in immunology. 2024; 15: 1396759. https://doi.org/10.3389/fimmu.2024.1396759
- Chen X., Wang M., Chen F., et al. Correlations between macrophage polarization and osteoinduction of porous calcium phosphate ceramics. Acta Biomaterials. 2020; 103: 318–332. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2019.12.019
- Li M., Guo X., Qi W., et al. Macrophage polarization plays roles in bone formation instructed by calcium phosphate ceramics. Journal of Materials Chemistry B. 2020; 8(9): 1863–1877. https://doi.org/10.1039/C9TB02932J
- Shang L., Shao J., Ge S. Immunomodulatory Properties: The Accelerant of Hydroxyapatite-Based Materials for Bone Regeneration. Tissue Engineering Methods (Part C). 2022; 28(8): 377–392. https://doi.org/10.1089/ten.tec.2022.00111112
- Nie Z., Hu Z., Guo X., et al. Genesis of osteoclasts on calcium phosphate ceramics and their role in material-induced bone formation. Acta Biomaterials. 2023; 157: 625–638. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2022.11.005
- Pearson J.J., Gerken N., Bae C., et al. In vivo hydroxyapatite scaffold performance in infected bone defects. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 2020; 108(3): 1157–1166. https://doi.org/10.1002/jbm.b.34466
- Hu C., Zilm M., Wei M. et al. Fabrication of intrafibrillar and extrafibrillar mineralized collagen/apatite scaffolds with a hierarchical structure. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2016; 104(5): 1153–1161. https://doi.org/10.1002/jbm.a.35649
- Zou L., Zhang Y., Liu X., et al. Biomimetic mineralization on natural and synthetic polymers to prepare hybrid scaffolds for bone tissue engineering. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2019; 178: 222–229. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2019.03.004
- Hu C., Zhang L., Wei M. Development of biomimetic scaffold woth both intrafibrilar and extrafibrillar mineralization. ACS Biomaterials Science & Engineering. 2015; 1(8): 669–676. https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.5b00088
- Ciocca L., Lesci I.G., Mezini O., et al. Customized hybrid biomimetic hydroxyapatite scaffold for bone tissue regeneration. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 2017; 105(4): 723–734. https://doi.org/10.1002/jbm.b.33597
- Xu S.J., Qiu Z.Y., Wu J.J., et al. Osteogenic differentiation gene expression profiling of hMSCs on hydroxyapatite and mineralized collagen. Tissue Engineering Part A. 2016; 22(2): 170–181. https://doi.org/10.1089/ten.tea.2015.0237
- Qiu Z.Y., Cui Y., Tao C.S., et al. Mineralized collagen: rationale, current status, and clinical applications. Materials (Basel). 2015; 8(8): 4733–4750. https://doi.org/10.3390/ma8084733
- Khalaf A.T., Wei Y., Wan J., et al. Bone Tissue Engineering through 3D Bioprinting of Bioceramic Scaffolds: A Review and Update. Life (Basel). 2022; 12(6): 903. https://doi.org/10.3390/life12060903
- Abbadessa A., Ronca A., Salerno, A. Integrating bioprinting, cell therapies and drug delivery towards in vivo regeneration of cartilage, bone and osteochondral tissue. Drug delivery and translational research. 2024; 14(4): 858–894. https://doi.org/10.1007/s13346-023-01437-1
- Saberi A., Kouhjani M., Mohammadi M., Hosta-Rigau L. Novel scaffold platforms for simultaneous induction osteogenesis and angiogenesis in bone tissue engineering: a cutting-edge approach. Journal of nanobiotechnology. 2023; 21(1): 351. https://doi.org/10.1186/s12951-023-02115-7
- Yuan X., Zhu W., Yang Z., et al. Recent Advances in 3D Printing of Smart Scaffolds for Bone Tissue Engineering and Regeneration. Advanced Materials. 2024; e2403641. https://doi.org/10.1002/adma.202403641
- van der Heide D., Cidonio G., Stoddart M.J., D’Este M. 3D printing of inorganic-biopolymer composites for bone regeneration. Biofabrication. 2022; 14(4): 10.1088/1758-5090/ac8cb2. https://doi.org/10.1088/1758-5090/ac8cb2
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.
©
Эта статья открытого доступа по лицензии CC BY 4.0. Издательство: ФГБУ «НМИЦ РК» Минздрава России.